Bronhu skalošana. Bronhoalveolārā skalošana

- diagnostikas procedūra, kuras būtība ir dzīvnieka sterila šķīduma ievadīšana bronhos, plaušās, tā turpmākā noņemšanā, kā arī iegūtā parauga šūnu izpēte, nosakot mikroorganisma jutīgumu pret antibiotikām.

Diagnostikai tiek izmantots bronhoskops, kas ļauj ārstam iegūt iespēju detalizēti novērtēt elpceļus un veikt analīzi no bojātās vietas.

BAL ir terapeitiska procedūra. Daudziem mājdzīvniekiem pēc procedūras ievērojami uzlabojas elpošanas funkcija.

Bronhoskopiju kopā ar mazgāšanas līdzekļu savākšanu bieži izmanto veterinārajā praksē. Bronhoskopija ļauj noteikt iekaisuma pakāpi, bronhektāzes, elpceļu sabrukumu, audzēja bojājumus. Uztriepju paraugu ņemšana - lai novērtētu iekaisuma raksturu pēc šķidruma šūnu sastāva, lai veiktu mikrobioloģisko pētījumu, lai atklātu patogēnu.

Diagnozes pazīmes, indikācijas, simptomi: metodes efektivitāte

Šķidruma uzņemšana tiek veikta no pacienta bronhiem, bronhioliem un alveolām. Tā rezultātā ārsts saņem detalizētu informāciju par bronhu un plaušu darbu.

Lielākā daļa apakšējo elpceļu slimībām ir līdzīgi simptomi... Pamatojoties tikai uz fiziskās pārbaudes datiem (dzīvnieka pārbaude, plaušu klausīšanās), veterinārārsts nevar noteikt precīzu diagnozi. Tad, tā kā plaušu rentgenogrāfija var atklāt bronhu iekaisumu, bojājuma pakāpi. Tomēr, pateicoties tam, nav iespējams noteikt patoloģiskā procesa būtību.

BAL ļauj atšķirt alerģiskas, infekcijas, audzēja problēmas. Šī metode ir diezgan informatīva, ja ir ilgstošs infekciozs bronhīts, jo tas ļauj ātri izvēlēties piemērotas zāles, kas visefektīvāk ietekmē patogēnu.

Bronhualveolārā skalošana suņiem un citi dzīvnieki tiek veikti, izmantojot stingru bronhoskopu vispārējā anestēzijā.

Slimības, kurām nepieciešama iesniegtā diagnoze:

Galvenie elpceļu iekaisuma, sabrukuma simptomi:

• Hronisks neproduktīvs klepus
• Aizdusa;
• Nosmakšana;
• Gļotādu cianoze;
• Neiecietība pret slodzēm;
• Letarģija.

BAL tehnika: diagnostikas precizitāte

Pētījums tiek veikts ar vispārēju anestēziju. Process aizņem nedaudz laika (apmēram 10 minūtes). Procedūra ir pilnīgi nesāpīga, lai gan daži lolojumdzīvnieki pēc tamponu ņemšanas var sajust diskomfortu. Pēc BAL slimības klīniskā aina kļūst labāka (uzlabojas elpošana, samazinās klepus intensitāte).

Ar ātrumu 0,5 ml uz 1 kg dzīvnieku svara ielej sterilu šķīdumu. Tad to ātri atsūc. Labs rezultāts ir 50% apjoma atgūšana. Pārējo absorbē elpošanas trakta gļotāda.

Apmēram 15 minūtes pēc procedūras lolojumdzīvnieku rūpīgi uzrauga, vai nav elpošanas distresa, gļotādas cianozes. Dzīvnieks ātri atgriežas un tajā pašā dienā atgriežas pie īpašnieka.

Mikrobioloģisko un citoloģisko pētījumu rezultāti tiek sagatavoti 7 darba dienu laikā. Tādējādi BAL ir informatīvs pētījums, kas ļauj precīzi diagnosticēt, kā arī ātri izvēlēties mājdzīvnieka ārstēšanu.

BAL nepieciešamība un drošība: Visotas veterinārārstu profesionālā pieeja

Ir svarīgi saprast, ka ilgstošs hronisks progresējošs klepus var norādīt uz smagu bronhopulmonāru slimību attīstību, kuras ir grūti ārstējamas.

Piemēram, kaķu astmai ir liels nāves risks. Tāpēc bronhoalveolārā skalošana kaķiem ļaus savlaicīgi un precīzi diagnosticēt, kā arī izvēlēsies terapiju, kas ļaus agrīnā stadijā atrisināt problēmu un uzlabot mājdzīvnieka dzīves kvalitāti.

BAL tiek uzskatīts par drošu un efektīvu diagnostikas metodi. Tas nodrošina dziedinošs efekts... Pēc procedūras klepus uz īsu brīdi pazūd. Nepieciešama minimāla anestēzija. Sagatavošanas laikā tam nav blakusparādību.

- Šī ir bronhoskopiska metode, kā iegūt skalošanu no vismazāko bronhu (bronhiolu) un plaušu alveolāro struktūru virsmas citoloģiskiem, mikrobioloģiskiem, bioķīmiskiem un imunoloģiskiem pētījumiem. Dažreiz to lieto terapeitiskos nolūkos, lai attīrītu iekaisušos elpceļus no pārmērīgas sekrēcijas strutas izdalīšanās.

Veterinārajā praksē mēs izmantojam šo diagnostikas metodi, lai veiktu iegūtā materiāla citoloģisko analīzi, kā arī bakterioloģiskiem pētījumiem. Tādējādi diagnoze ietver šūnu, kas veido bronhu gļotas, kvalitatīvu / kvantitatīvu novērtējumu (piemēram, pacientā dominē eozinofīls vai neitrofīls iekaisums). Arī iegūto materiālu sēj uz barības vielu barotnēm, lai noteiktu, kurš patogēns kolonizē bronhu virsmu, un tiek titrēta atrastā mikroorganisma jutība pret antibiotikām.

Kad precīzi tiek veikts pētījums?

Ļoti bieži tikšanās ar veterinārārsts atvest dzīvniekus, kuriem anamnēzē ir bijuši hroniski klepus uzbrukumi (simptomu parādīšanās tika novērota pirms vairāk nekā mēneša), periodiski rodas trokšņaina elpošana, nosmakšanas uzbrukumi utt.

Interesanti, ka nav rentgenstaru krūtīsne arī klīniskā analīze asinis vai deguna / konjunktīvas tamponi var nepalīdzēt atšķirt kaķu astmu un bronhītu. Izmaiņas uz rentgena krūtīs nav specifiskas: parasti tas ir tāds pats bronhu vai bronhu-intersticiāla modeļa stiprināšanas veids. Runājot par mazgāšanos no augšējo elpceļu virsmas, jāatceras, ka mikrobu ainava deguna eju bronhiolu un gļotādu līmenī ir ļoti atšķirīga, un, atklājot mikoplazmu uz acs konjunktīvas virsmas, mums nav tiesību apgalvot, ka šis patogēns izraisa neatgriezeniskas izmaiņas bronhu līmenī.

Suņiem hronisku klepu var diagnosticēt arī, izmantojot BAL. Piemēram, suņa klepus var būt ļoti atšķirīgu slimību simptoms, piemēram, infekciozais bronhīts un idiopātiskais bronhīts rada tādas pašas izmaiņas krūšu kurvja rentgenogrāfijā, taču nepieciešama pilnīgi atšķirīga ārstēšana. Ļoti vērtīga metode terapijas atlasei kucēnu un jaunu suņu smagas, ugunsizturīgas (izturīgas) pneimonijas ārstēšanai pret antibiotiku terapiju. Galu galā bakterioloģiskie pētījumi ļauj precīzi noteikt, kurš patogēns ir izturīgs pret standarta antibakteriālo shēmu. Ir arī iespējams precīzi un ātri izvēlēties nepieciešamo un specifisko antibiotiku.

Turklāt, izmantojot metodi, mēs varam izslēgt eozinofīlu plaušu infiltrācijas sindromu, kas attīstās jauniem dzīvniekiem un kam nepieciešama agresīva steroīdu terapija, lai apturētu krampjus, savukārt steroīdi, kas parakstīti ar aktīvu baktēriju procesu, var nogalināt pacientu.

Kā tiek veikti pētījumi

Mēs izmantojam bronhoskopijas metodi, lai savāktu mazgāšanas reizes no bronhu virsmas. Tiek ieviests bronhoskops līdz pat 2-3 pakāpes bronhu līmenim, kas ļauj pārbaudīt bronhu koka virsmu un arī izslēgt iespējamos svešķermeņiieslodzīti elpošanas traktā, piemēram, aktīvās skriešanas laikā. Pēc tam, izmantojot bronhoskopu, mēs injicējam nelielu daudzumu sterila šķīduma un ļoti ātri to paņemam atpakaļ. Iegūto materiālu pārbauda mikroskopā un pārklāj ar speciālu barotni.

Metodes drošība

Bronhoalveolārā skalošana tiek uzskatīta par drošu, ļoti efektīvu diagnostikā un bieži ārstniecisku. Klepus izzušana ir raksturīga neilgu laiku pēc procedūras. Nepieciešama minimāla anestēzija (sedācija). Veicot īpašas mācības, tam nav blakusparādību.

Kāpēc jums jāveic šis pētījums

Ir ļoti svarīgi saprast, ka hronisks ilgstošs progresējošs klepus bieži norāda uz neatgriezenisku, smagu bronhu-plaušu problēmu attīstību, kas, pat pareizi izvēloties terapiju, var nelabvēlīgi reaģēt uz ārstēšanu. Kaķu astmu raksturo augsts pēkšņas nāves risks. Tātad savlaicīga diagnoze un izvēlēta terapija ļauj agrīnā stadijā atbrīvoties no problēmām un ievērojami uzlabot jūsu pet dzīves kvalitāti.

Veterinārārsts
Filimonova D.M.

Ar mērenu un smagu obstruktīvu ventilācijas traucējumu pakāpi nepietiek ar bronhodilatatoru un zāļu lietošanu, kas veicina gļotādu aizbāžņu noraidīšanu.Dažos gadījumos tiek parādīta bronhu koka mehāniska tīrīšana, mērķtiecīga vizuāla bronhu skalošana.

Katru segmentālo bronhu ir iespējams mazgāt tikai ar bronhoskopiju. Vietējā anestēzijā tas nav iespējams, un parastās ventilācijas metodes nav piemērotas bronhoskopijai anestēzijas laikā. Mums ir nepieciešama mehāniskās ventilācijas metode, kas ne tikai novērsīs turpmāku hipoksijas un hiperkapnijas palielināšanos, bet arī nodrošinās optimālu gāzes apmaiņu, neskatoties uz vienlaicīgu endobronhiālu iejaukšanos, izmantojot bronhoskopa lūmenu. Šo ventilācijas metodi ierosināja Sanders (1967). Tieši ar šo injekcijas metodi ir iespējama visu segmentu konsekventa, rūpīga mazgāšana. Gadījumā, ja tiek izmantota dubultā lūmena Carlens caurule, šādi apstākļi nav sasniedzami; mazgāšana tiek veikta akli un nekontrolējami.

Patiesa bronhu skalošanas ieviešana klīnikā ir saistīta ar Thompson un Pryor (1964, 1966) priekšlikumu. Lai atbloķētu mazos un vidējos bronhus, Tpotrzons anestēzijas laikā, veicot bronhoskopiju, pārmaiņus katetrizēja segmentālos bronhus, zem spiediena injicējot tajos 50 ml šķidruma un nekavējoties to izsūcot caur to pašu katetru. Šķidruma injekcija ļāva mehāniski noņemt recekļus no bronhiem. Visai skalošanai bija nepieciešami 800-1500 ml, vienu trešdaļu varēja iesūkt atpakaļ, bet pārējo iesūkt. PH normalizēšanai Thompsons izmantoja fizioloģisko šķīdumu, nātrija bikarbonātu, proteolītiskos enzīmus un mazgāšanas līdzekļus.

Smagākais pacientu stāvoklis, pēc Thompson et al (1966) domām, nav kontrindikācija bronhu skalošanai, jo labākie rezultāti tika iegūti gandrīz mirstošiem pacientiem. Mūsu pašu pieredze bronhu skalošanas modifikācijas piemērošanā pilnībā apstiprina pozitīvu šāda bronholoģiskā palīglīdzekļa novērtējumu. Tomēr parastā bronhoskopijas tehnika, pat izmantojot elpošanas bronhoskopus, nenodrošina uzticamus apstākļus. Galvenais trūkums ir tāds, ka bronhu segmentālajai skalošanai ir nepieciešama daudzkārtēja elpošanas ķēdes spiediena samazināšana, pateicoties bronhoskopa skata loga atvēršanai. Ar astmatisko statusu un hipoksisko komu jebkādas mehāniskās ventilācijas pauzes nav pieļaujamas. Ventilējiet pacientus astmas statusa laikā, radot augstspiediena ieelpojot ar elpošanas bronhoskopu, tas ir grūti.

Mūsu klīnikā veiktie meklējumi ļāva mums izvēlēties iespēju, kas pilnībā saglabā visas sākotnējā Tompsona priekšlikuma priekšrocības, bet nepārtrauktas un efektīvas mehāniskās ventilācijas apstākļos, ieskaitot ilgstošas \u200b\u200bpacienta sistēmas - bronhoskopa - aparāta spiediena samazināšanas periodus.

Īstenojot šo metodi, uzdevums ir izvairīties no gāzes noplūdes caur bronhoskopa atvērto skata logu. Sandersa priekšlikums bija izveidot virzītu skābekļa plūsmu bronhoskopa mēģenē (11. attēls). Šim nolūkam skābekli injicē caur injekcijas adatu, kas iebūvēta caurules proksimālajā daļā. Tievās adatas pretestība ir augsta, tādēļ, lai izveidotu pietiekami jaudīgu skābekļa strūklu, kas spēj paaugstināt intratracheālo spiedienu par vairākiem desmitiem centimetru ūdens kolonnas, injekcijas adatas ievadā jāizveido vairāku atmosfēru spiediens. Bronhoskopa caurule darbojas kā difuzors. Izpūstā gāzes strūkla ne tikai iet uz plaušu pusi, bet arī aizrauj gaisu (iesmidzināšana), tāpēc ieelpojot ne tikai nenotiek skābekļa noplūde, bet, gluži pretēji, atmosfēras gaiss tiek iesūkts un atšķaida elpošanas maisījumu. Skābekļa plūsma tiek periodiski pārtraukta, un pēc tam notiek pasīva izelpošana atmosfērā.

Attēls: 11. Gāzes plūsmas virziens mākslīgās ventilācijas injekcijas metodes laikā bronhoskopijas laikā: 1-skābekļa padeve caur bronhoskopiskās caurules injekcijas adatu; 2-gaisa iesūkšana no atmosfēras; 3 cauruļu bronhoskops; 4 glottis; 5-traheja.

Kopā ar inženieri LB Taflinsky esam izstrādājuši īpašu iesmidzināšanas bronhoskopu un automātisku iesmidzināšanas respiratoru ar fāzes pārslēgšanu laikā. Izmantotā modificētā injekcijas ventilācijas metode nodrošina obligātu intratraheālā spiediena mērīšanu, kā arī bloķēšanu, novēršot pārmērīgu spiediena palielināšanos, atsevišķu iedvesmas un izelpas ilguma pielāgošanu, bronhologa sejas aizsardzību no pacienta ieelpotā gaisa ieelpošanas.

Injekcijas ventilācija tiek veikta "manuāli", aizverot skābekļa padeves kanālu, kuram tiek saspiesta skābekļa šļūtene, vai tiek izmantots šļūtenē iebūvētais pneimatiskais slēdzis - slēdzis vai īpašs respirators.

Izmantojot šo metodi, endoskopiskās manipulācijas praktiski neietekmē mehāniskās ventilācijas parametrus, un bronhologs iegūst iespēju nepārtraukti strādāt ar pastāvīgi atvērtu bronhoskopa redzes logu. Inhalācijas laikā intratracheālo spiedienu var noregulēt līdz 15-40 cm ūdens. Art., Kaut arī ir iespējams iegūt lielāku spiedienu. Jo smagāks ir pacienta stāvoklis astmas statusa dēļ, jo lielāks spiediens jāizveido ieelpojot. Elpošanas ātrums ir 10-15 minūtē. Skābekļa saturs inhalējamajā maisījumā būtu jāregulē: pie ārkārtējas ventilācijas pakāpes un obstruktīviem traucējumiem ir nepieciešama ventilācija ar tīru mitrinātu skābekli, citiem pacientiem skābekļa saturu inhalējamajā maisījumā var samazināt līdz 50-70% (12. att.).

Attēls: 12. Asins gāzes bronhu skalošanas laikā injekcijas mehāniskās ventilācijas apstākļos. A - sākotnējais; B - pirms intubācijas un ventilācijas laikā ar tīru O 2; B - pēc 5 minūtēm Ing. Ventilatora maska; D - pēc 10 min. Mehāniskā ventilācija; D - pēc 15 minūtēm inženieris IVL; E - tūlīt pēc bronhoskopijas un ekstrubācijas beigām

Injekcijas ventilācijas laikā arteriālo asiņu pO_ uzreiz ievērojami palielinās, un hiperkapnija samazinās. Bronhoskopa ieviešanas laikā tas bieži notiek arteriālā hipertensija, bet bronhoskopijas laikā ir tendence uz normalizēšanos asinsspiediens, bieži pazūd iepriekš pastāvošā sirds aritmija.

Bronhoskopija un skalošana jāveic intravenozas barbituriskas anestēzijas laikā ar relaksantiem, dažreiz ar papildu seduxen. Ja bronhospastiskā sastāvdaļa ir izteikta un iepriekšēja fluorotāna ieelpošana atvieglo pacienta stāvokli, tad šādiem pacientiem anestēzijas ierosināšanai un tās uzturēšanai jāizmanto fluorotāns. Ekstrubācija jāveic pēc sākotnējo elpošanas atjaunošanās pazīmju parādīšanās. Bronhu skalošanai pietiek ar 15-25 minūtēm.

Bronhus vajadzētu izskalot ar siltu fizioloģisko šķīdumu vai furagin-K šķīdumu, kas sajaukts ar fizioloģisko šķīdumu. Parasti tiek patērēts līdz 800 ml šķidruma; apmēram trešdaļu šķidruma var nosūkt. Dažos gadījumos šķidrums tiek absorbēts tik ātri, ka tā atdeve ir nenozīmīga.

Parasti ar mazgājamo ūdeni tiek noņemts liels skaits mazu desai līdzīgu baltu trombu bronhu metienu veidā (13. att.). Šķidruma izvadīšana no plaušām dažreiz turpinās pirmās 24 stundas pēc mazgāšanas, atvieglojot klepu un krēpu izdalīšanos.

Attēls: 13. Bronhu čaulas izskalo endobronhiālās bronhoskopiskās skalošanas laikā

Lai apturētu asthmaticus statusu, nepieciešama viena, reti divas mazgāšanas reizes. Pacienti ievēro vislielāko atvieglojumu dažas stundas pēc iejaukšanās beigām.

Lai nostiprinātu ārstēšanas pozitīvos rezultātus, izmantojot dažādi termini jāveic atkārtota skalošana. Bronhu skalošana ļauj samazināt hormonu devu pacientiem, kuri ir pieraduši, un dažiem pacientiem atteikties no steroīdu lietošanas. Samazinājās arī rezistence pret bronhodilatatoriem.

Pašlaik bronhu skalošana, proti, segmentāla skalošana, bloķētu mazu bronhu mērķtiecīga mazgāšana ar šķidrumu zem spiediena un nevis "nejauša skalošana" ir nepieciešama, lai ārstētu pacientus ar smagām formām bronhiālā astma un astmas statuss.

Autori): S.K. Sobakina, P.V. Belokopitovs, A.N. Lapšins, S.G. Atanasova, A.A. Ivanova
Organizācija (-s): Maskavas Veterinārās akadēmijas novatoriskais veterinārais centrs
Žurnāls: №5 - 2018

UDC 619: 616.24

Atslēgas vārdi: bronhoalveolārā skalošana, bronhoalveoli, bronhoskopija. Atslēgas vārdi: bronhoalveolārā skalošana, bronhoalveoli, bronhoskopija /

Saīsinājumi: BAL, bronhoalveolu skalošana, virsmaktīvā viela, virsmaktīvā viela

Pētījuma mērķis: aprakstīt esošās metodes bronhoalveolu skalošanai

Abstrakts

Bronhoalveolārā skalošana (BAL) ir minimāli invazīva metode, ko humānajā un veterinārajā medicīnā izmanto, lai savāktu paraugus no zemākas kārtas bronhiem un alveolārajām telpām.

BAL šķidruma paraugu ņemšana tiek izmantota iedzimtas, šūnu un humorālas šūnu reakcijas izpētei šūnu populācijas klātbūtnes dēļ, kas var atvieglot dažādu difūzu plaušu slimību diagnostiku.

Bronhoalveolārā skalošana (BAL) ir minimāli invazīva metode, ko izmanto cilvēku un veterinārajā medicīnā, lai ņemtu paraugus zemākas paaudzes bronhos un alveolārajās telpās.

BAL paraugu ņemšana tiek izmantota, lai pētītu iedzimtu, šūnu un humorālu šūnu atbildes reakciju šūnu populācijas klātbūtnes dēļ, ko izraisa šūnu populācijas klātbūtne, kas var atvieglot dažādu difūzu plaušu slimību diagnostiku.

Bronhoskopija un BAL var sniegt galīgas diagnozes elpceļu iekaisuma slimību, bronhektāzes, eozinofīlās pneimonijas, plaušu parazītu, baktēriju pneimonijas, mikotiskās pneimonijas un neoplāzijas gadījumos.

Indikācijas BAL ir klepus, neskaidras izmaiņas krūtīs vai tās nav, neskatoties uz klīnisko pazīmju izpausmēm, kas atbilst elpošanas trakta slimībām, plaušu jaunveidojumiem, pneimonijai, stridoram, bronhu gļotu aizsprostojuma noņemšanai.

Aizdusa (relatīva kontrindikācija) un koagulopātija ir BAL kontrindikācijas.

Ir vairāki kritēriji, kas garantē šķīduma iekļūšanu apakšējos elpceļos (bronhoalveolos): noņemtā šķidruma procentuālais daudzums un virsmaktīvās vielas slāņa klātbūtne.

Lielāks atgūtā šķīduma procents (apmēram 50%) norāda, ka paraugus ņem no apakšējiem elpošanas ceļiem. Suņiem atgūtais vidējais šķīdums ir 42-48%, kaķiem - 50-75%. Savukārt nelielu daudzumu reģenerēta šķidruma (< 40%) говорит о том, что проба взята из крупных дыхательных путей .

Virsmaktīvā viela (virsmaktīvā viela) ir fosfolipīdu, olbaltumvielu un jonu maisījums, ko II tipa pneimocīti izdala epitēlija alveolārajā virsmā, lai samazinātu alveolārās virsmas spraigumu. Tā kā plaušu virsmaktīvā viela elpceļos atrodas tikai alveolārā epitēlija apvalkā, virsmaktīvo vielu klātbūtne BAL apstiprina, ka paraugi tika ņemti no alveolām. BAL paraugos virsmaktīvā viela parādās kā putas (1. attēls).

Attēls: 1. Virsmas aktīvo vielu klātbūtne BAL šķidruma paraugā

Citoloģiskā analīze joprojām ir pamats BAL šķidruma novērtēšanai. Vesels dzīvnieks veselīgā dzīvniekā parasti satur makrofāgus, limfocītus, neitrofilus, eozinofilus un tukšās šūnas.

BAL šķidruma paraugi tiek uzskatīti par nepiemērotiem, ja tie ir piesārņoti no citām elpošanas trakta zonām vai neatspoguļo bronhoalveolāru vidi.

BAL tehnika

Galvenā BAL metode ietver sterila izotoniskā šķidruma infūziju apakšējos elpceļos un šī šķīduma aspirāciju. BAL var veikt akli, ievietojot katetru plaušās caur endotraheālo cauruli, ar bronhoskopisku palīdzību vai veicot fluoroskopiju. BAL ar bronhoskopisku palīdzību ļauj vizualizēt apakšējos elpceļus un novirzīt BAL uz visvairāk skartajām plaušu daivām.

Veicot BAL suņiem

Apakšējo elpceļu slimība suņiem izraisa strukturālas izmaiņas bronhos (piemēram, gļotādas sabiezēšanu, pastiprinātu eksudāciju) un izmaiņas normālā epitēlija oderes šūnu populācijā.

BAL suņiem tiek veikts ar vispārēju anestēziju. Pacientiem, kuriem veic BAL šķidrumu, ieteicams atbalstīt skābekļa terapiju procedūras laikā un vēl kādu laiku pēc tās, līdz skābekļa piesātinājums normalizējas.

Aklā BAL laikā sterilu urīnizvadkanāla katetru caur sterilu endotraheālā cauruli iekšķīgi ievieto trahejā, līdz tas maigi ieķeras distālajā bronhā, izjūtot pretestību. Jāuzmanās, lai katetru neievietotu pārāk tālu elpceļos un neizraisītu jatrogēnu pneimotoraksu, sabojājot plaušu audus transbronhiāli. Pēc ievadīšanas no trim līdz piecām reizēm injicē 25 ml vai 5 ml / kg (pēc dažādiem avotiem) silta (37 C) sterila izotoniska šķīduma, nekavējoties veic aspirāciju (transtracheal skalošana) un pēc tam veic 2-3 manuālas elpas ar Ambu maisu. Pēc tam atlikušo šķidruma daļu iesūc ar gravitāciju vai ar aspiratoru. Dažreiz dzīvnieka aizmugures pacelšana var palielināt iegūtā šķidruma daudzumu (2. attēls).

Attēls: 2. Dzīvnieka ķermeņa aizmugures pacelšana, lai palielinātu iegūtā šķidruma daudzumu

Šī BAL tehnika bieži nodrošina plaušu astes daivu skalošanu (3. attēls).

Attēls: 3. BAL instrumentu komplekts

Bronhoskopiskā BAL laikā bronhoskopu iekšķīgi ievada trahejā. Pirms BAL veikšanas tiek veikta pilnīga bronhoskopiskā izmeklēšana. Pēc skalošanas vietas noteikšanas bronhoskops tiek rūpīgi iespiests apakšgrupas bronhā. Stingra bronhoskopa piestiprināšana pārbaudītajam bronham nodrošina injicētā šķīduma maksimālu ekstrakciju. Kad tiek panākta stingra pielāgošanās bronham, siltu (37C °) izotonisku šķīdumu injicē caur bronhoskopa biopsijas kanālu. Siltā izotoniskā ieviešana fizioloģiskais šķīdums lai samazinātu bronhu spazmas risku. 1 līdz 4 reizes injicē kopējā daudzumā no 5 līdz 50 ml šķīduma (1-2 ml / kg). Pētījumos atklāts, ka, lietojot tilpumu ml / kg ķermeņa svara, tiek iegūts lielāks atgūtā šķidruma tilpums. Neliela šķīduma daudzuma ievadīšana var nebūt pietiekama, lai sasniegtu alveolus. Pēc fizioloģiskā šķīduma ievadīšanas elpceļos tūlītēja aspirācija notiek ar šļirci vai aspiratoru, kas sērijveidā savienots ar bronhoskopa aspirācijas vārstu vai ar urīnizvadkanāla katetru caur sterilu savākšanas mēģeni. Šķīduma trūkums aspirācijas laikā var būt saistīts ar elpceļu sabrukumu, un aspirācijas šļircei jāpieliek mazāk pūļu. Ja negatīvs spiediens joprojām atrodas, bronhoskopu var pavilkt dažus milimetrus, taču šajā gadījumā saņemtā šķidruma tilpums var būt mazāks. BAL šķidrumu ieteicams savākt no vairākām plaušu daivām, pat ja plaušas ir izkliedētas. Pacientiem ar fokāliem plaušu bojājumiem (aspirācijas pneimonija) BAL jāveic tikai no skartās plaušu daivas. Ja tiek iegūts nepietiekams šķīduma tilpums vai ja nav putu, procedūra jāatkārto.

Humānās medicīnas pētījumi ir parādījuši, ka BAL šķidrums ar bronhoskopisku palīdzību nodrošina augstākas diagnostikas kvalitātes un uzticamības paraugus nekā nekontrolēta tehnika. Bet īpatnība un īpaša uzmanība, kas jāpievērš šīs tehnikas izmantošanai veterinārmedicīnā, mūsuprāt, ir grūtības sagatavot instrumentālo kanālu pētījumiem, lai izslēgtu BAL paraugu bronhoskopa instrumenta kanāla floras piesārņojumu.

BAL šķidrums kaķiem

Attēls: 4. BAL veikšana kaķim

Mazāks kaķu elpošanas trakta izmērs apgrūtina bronhoskopiju. Tas ir saistīts ar lielāku komplikāciju skaitu salīdzinājumā ar citām dzīvnieku sugām. Piemēram, retrospektīvā elastīgās bronhoskopijas un BAL šķidruma pārskatā kaķiem veterinārajā centrā tika konstatēti 38% komplikāciju, salīdzinot ar 5% cilvēkiem. Lielākā daļa (24%) komplikāciju šajā pārskatā tiek uzskatītas par vieglām (piemēram, hemoglobīna desaturācija). Kaķiem pirms BAL ieteicams pirms inhalācijas ievadīt bronhodilatatorus (salbutamolu, ipratropija bromīdu). BAL kaķiem ir līdzīgs BAL suņiem. Injicētā šķīduma tilpums svārstās līdz 20 ml vai 3-5 ml / kg, visbiežāk pietiek ar 2-3 injekcijām (4. attēls).

Pētījumi, kas salīdzināja 2 aspirācijas metodes, manuālo un sūkšanas metodi, parādīja, ka sūkšanas aspirācija dod vairāk šķidruma un labākus paraugus, taču tas neietekmē galīgo BAL šķidruma analīzi.

BAL ar fluoroskopijas palīdzību

Retrospektīvā pētījumā kaķiem tika veikts BAL šķidrums ar rentgena palīdzību. Intubēts pacients saņēma 0,035 "hidrofilu vadu, caur kuru tika ievietots 8Fr sarkanās gumijas katetrs. BAL tika veikts, divreiz injicējot 5 ml sterila fizioloģiskā šķīduma, ko aspirēja ar 20 ml šļirci. Fluoroskopiski veicināta BAL šķidruma rezultātā tiek veikta tikai galvaskausa kateterizācija labā daiva plaušas beidzās neveiksmīgi, atlikušo plaušu daivu kateterizācija bija veiksmīga, citoloģiskās analīzes rezultāti atbilda visām nepieciešamajām prasībām. Tāpēc fluoroskopiski atbalstīts BAL šķidrums var būt praktisks, uzticams un drošs paņēmiens paraugu ņemšanai no visām plaušu daivām, izņemot galvaskausa labo daivu (5., 6. att.).

Attēls: 5. Veicot fluoroskopiski veicinātu BAL šķidrumu sunim

Attēls: 6. Vizualizācija ar fluoroskopiju BAL laikā

Blakusparādības un komplikācijas pēc BAL

Nelielas komplikācijas var būt asiņošana, pastāvīga hipoksēmija, bronhu spazmas un vazovagāla sinkope. Galvenās komplikācijas ir pneimonija, aritmijas, pneimotorakss, pneimomediastīns, elpošanas mazspēja un sirds apstāšanās.

Visiem pacientiem pēc BAL nepieciešama papildu skābekļa padeve. Ja tiek novērota cianoze vai samazināta piesātinājums ar skābekli, nepieciešama papildu skābināšana. Ja pacientam nav pietiekami daudz papildu skābekļa, jāapsver citi iemesli, piemēram, bronhu spazmas vai pneimotoraks. Arī pēc jebkādas skalošanas procedūras var īslaicīgi pasliktināties elpošanas funkcija vai klepus.

Ir ziņots par spontāna pneimotoraksa gadījumiem. Reti komplikācijas pēc BALF var būt letālas, šādiem pacientiem pirms BALF vai nu bija elpošanas distresa sindroms, vai arī viņi pēc procedūras nespēja atjaunot pietiekamu skābekļa daudzumu un ventilāciju.

Ziņots par 2% mirstības / eitanāzijas līmeni (2/101). Šajā pētījumā mirstība bija saistīta ar pirms-BAL šķidruma elpošanas distresa sindromu. Šie atklājumi ļauj secināt, ka iepriekšējs elpas trūkums ir relatīva kontrindikācija BAL. Ir ziņots arī par nozīmīgu bronhu spazmu pēc BAL suņiem ar eozinofīlu elpceļu slimību, kuru kontrolēja ar bronhodilatatoriem un oksigenāciju. Retrospektīvā elastīgās bronhoskopijas un BAL šķidruma pārskatā kaķiem tika ziņots, ka 6% kaķu bija nepieciešama nakts hospitalizācija un skābekļa terapija, 3% attīstījās pneimotoraks un 6% mirstība vai eitanāzija bija saistīta ar nespēju atjaunot ventilāciju pēc procedūras. Par ievērojami mazāk komplikāciju tika ziņots kaķiem, kuri iepriekš 12-24 stundu laikā bija saņēmuši 0,01 mg / kg s.c. terbutalīna. pirms bronhoskopijas un BAL (8%), salīdzinot ar kaķiem, kuri neko nesaņēma (40%). Iepriekšēja apstrāde ar inhalējamiem bronhodilatatoriem (salbutamolu, ipratropija bromīdu) pirms BAL novērš bronhu sašaurināšanos kaķiem, kuri ir jutīgi pret alergēniem. Tāpēc pašlaik ieteicams bronhodilatatorus iegūt pirms kaķu bronhoskopijas.

BAL šķidruma analīze

Lai iegūtu labākos rezultātus, BAL paraugu apstrāde jāveic vienas stundas laikā pēc savākšanas. Novērtējot citoloģiju, skalošanas paraugi no katras daivas jānovērtē atsevišķi. Vienā pētījumā 37% suņu bija atšķirīgi rezultāti, novērtējot dažādu plaušu daivu paraugus.

Katrā paraugā jāuzskaita vismaz 200 šūnas. Visizplatītākais BAL izolēto šūnu veids ir alveolārais makrofāgs. Kaķu BAL šķidrums parasti satur vairāk eozinofilu nekā citas sugas.

Lielākā daļa suņu ar bakteriālas infekcijas ir neitrofīls iekaisums. Suņiem ar hronisks bronhīts visbiežāk tiek novērots jaukts iekaisuma vai neitrofīlais iekaisums. Suņiem ar eozinofīlu bronhopneimoniju tiek novērots eozinofilu skaita pieaugums (no 20% līdz 450%). Jaukts iekaisums ir izplatīts arī sēnīšu infekciju klātbūtnē.

Kaķiem ar pneimoniju var rasties neitrofils iekaisums ar intracelulārām baktērijām vai bez tām. Kaķiem ar bronhītu vai astmu bieži ir palielināts saturs eozinofīli. Tomēr neitrofilais un eozinofīlais iekaisums nav patognomonisks infekcijas vai imunoloģiskajam procesam, jo \u200b\u200bneoplāzijā var novērot gan eozinofilu, gan neitrofilu iekaisumu.

No BAL šķidruma paraugiem ir grūti diagnosticēt jaunveidojumus. Visas šūnas jāpārbauda pēc ļaundabīgo audzēju kritērijiem. Nelielā pētījumā kaķiem ar histoloģiski diagnosticētu karcinomu parādījās neitrofīli iekaisumi, bet BAL šķidruma citoloģijā vēža pazīmes netika atrastas. Cits pētījums parādīja ievērojamu diferenciālo šūnu skaita pārklāšanos kaķiem ar pneimoniju, bronhītu un neoplāziju. Šo iemeslu dēļ BAL šķidruma skaits jāinterpretē kopā ar klīniskajām pazīmēm un radiogrāfiskajiem un bronhoskopiskajiem atklājumiem.

Parasti elpceļi nav sterili, kā rezultātā kvantitatīvais aprēķins baktēriju šūnas var palīdzēt atšķirt piesārņojumu no faktiskās elpceļu infekcijas. Baktēriju bronhopneimonijas klātbūtnei ir raksturīgs vairāk nekā 1,7 * 10 3 koloniju veidojošo vienību saturs mililitrā. Visi iegūtie paraugi ir jāanalizē attiecībā uz aerobu un mikoplazmu klātbūtni. Sēnīšu pārbaude jāveic endēmiskās vietās.

Ir ziņots par PCR izmantošanu sugu diagnostikā Mikroplazma, Bordetella bronchiseptica un Toxoplasma gondii... PCR rezultāti jāinterpretē piesardzīgi, jo Mycoplasma un Bartonella parasti var būt orofarneksā suņiem un kaķiem. Tāpēc pozitīvi rezultāti negarantē, ka šie patogēni izraisa strāvu klīniskās pazīmes pacients. Turklāt negatīvs rezultāts neizslēdz infekcijas klātbūtni. Kaut arī mikroorganisms var atrasties elpošanas traktā, tas var nebūt nelielā paraugā, ko izmanto DNS ekstrakcijai, kā rezultātā tiek iegūts kļūdaini negatīvs rezultāts.

1. tabula.

Citoloģija pēc BAL

.

Attēls: 7. Segmentēti neitrofīli un alveolāri att. 8. Atvieglots elpošanas epitēlijs

makrofāgi uz gļotu fona

Attēls: 9. Segmentēti neitrofīli fonā Att. 10. Epitēlija šūnu konglomerāts

eozinofīls

rozā starpviela - gļotas

secinājumi

Šīs procedūras diagnostisko vērtību nevajadzētu pārvērtēt, jo pacientiem ar elpošanas ceļu slimībām ir palielināts risks, kas saistīts ar anestēziju un elpošanas procedūrām. Procedūras risks vienmēr jānovērtē, ņemot vērā gaidītos rezultātus. Arī pētījumi liecina, ka BAL, ko papildina bronhoskopija, ir mazāk komplikāciju un lielāka iegūto paraugu diagnostiskā vērtība. Metodes izvēli var izdarīt arī, pamatojoties uz veterinārās iestādes materiālo bāzi, taču jebkurā gadījumā BAL būtu tehniski jāregulē un jāveic apmācītiem speciālistiem.

Literatūra

1. Kerola R. Reinero, DVM, PhD, diplomāta ACVIM (iekšējā medicīna), Misūri Kolumbijas Universitāte. Bronhualveolu skalošanas šķidruma savākšana, izmantojot aklo tehniku.

2. Bronchoalveolar lavage aspirācijas paņēmienu standartizācija, lai optimizētu suņu apakšējo elpošanas ceļu paraugu diagnostisko ražu, autore Katharine Sarah Woods.

3. Mills PC, Lister AL. Izmantojot urīnvielas atšķaidīšanu, lai standartizētu pleiras un bronhoalveolu skalošanas (BAL) šķidrumu šūnu un neakulāros komponentus kaķim. J. Fel. Med. Surg. 2006. gads; 8: 105-110. Mordelet-Dambrine M., Arnoux.

4. Melamies MA, Jarvinen AK, Seppala KM, Rita HJ, Rajamaki MM. Rezultātu salīdzinājums ar svaru koriģētām un fiksēta daudzuma bronhoalveolāras skalošanas metodēm veseliem Bīgliem. Am. J. Vet. Res. 72: 694–698, 2011.

5. Halkers VJ, Ouens WM, Patersons C u.c. Mikoplazmas, kas saistītas ar suņu infekcijas elpošanas ceļu slimībām. Microbiology 150: 3491-3497, 2004.

6. Creevy KE. Elpceļu novērtēšana un elastīgas endoskopiskas procedūras suņiem un kaķiem: laringoskopija, trahejas trans-trahejas mazgāšana, traheobronhoskopija un bronhoalveolāra skalošana. Veterinārā klīnika North Am Small Anim Practice 2009; 39: 869-880

7. Spektors D, kvieši J, Beamis D, Rohrbahs B, Taboada T, Legendre AM. Antigēna testēšana Blastomikozes diagnostikai. J Vet Intern Med 20: 711-712, 2006.

8. Egberink H, Addie D, Belak S et al. Bordetella bronchiseptica infekcijas kaķiem. Dž Fel Meds Surgs 11: 610–614, 2009.

9. Anfray P, Bonetti C, Fabbrini F, Magnino S, Mancianti F, Abramo F. \u200b\u200bKaķu ādas toksoplazmoze: gadījuma ziņojums. Vet Dermat 16: 131-136, 2005.

10. Amerikas krūšu kurvja biedrība. Bronhoalveolārās skalošanas vadlīnijas. 2012. gada 8. jūlijs.

11. Hawkins EC, Berry Cr. Modificētas kuņģa caurules izmantošana bronhoalveolārai skalošanai suņiem. J Am Vet Med Assoc 1999; 215 (11): 1635-1638.

12. Hawkins EC, Davidson MG, Meuten DJ un citi. Toxoplasma gondii citoloģiskā identifikācija eksperimentāli inficētu kaķu bronhoalveolārajā mazgāšanas šķidrumā. J Am Vet Med Assoc 1997; 210 (5): 648-650.

13. Hokinss EC, DeNicola DB. Trahejas mazgāšanas paraugu un bronhoalveolu skalošanas šķidruma citoloģiskā analīze suņu mikotisko infekciju diagnostikā. J Am Vet Med Assoc 1990a; 197 (1): 79-83.

14. Hokinss EC, DeNicola DB, Kuehn NF. Bronhoalveolārā skalošana plaušu slimību novērtēšanā suņiem un kaķiem: jaunākais sasniegums. J Vet Intern Med 1990b; 4: 267-274.

15. Hokinss EC, DeNicola DB, Plier ML. Bronhualveolu skalošanas šķidruma citoloģiskā analīze, diagnosticējot spontānu elpceļu slimību suņiem: retrospektīvs pētījums. J Vet Intern Med 1995; 9: 386-392.

16. Džonsons LR, Drazenovičs TL. Elastīga bronhoskopija un bronhoalveolāra skalošana 68 kaķiem (2001-2006). J Vet Int MEd 2007; 21: 219–225.

17. Silveršteina DC, Drobratz KJ. Elpošanas ceļu klīniskā novērtēšana. In: Ettinger SJ, Feldman EC, red. Veterinārās internās medicīnas mācību grāmata. 7. izdev. Saunders Elsevier: St Louis, 2010: 1055-1066.

18. Joneda KY, Morisejs BM. Pieaugušo elastīgās bronhoskopijas tehnika: 1. daļa. J Respir Dis 2008; 29 (11): 423-428.

19. Hawkins EC. Bronhoalveolārā skalošana. In: King LG, ed. Suņu un kaķu elpošanas ceļu slimību mācību grāmata. Saunders Elsevier: St Louis, 2004: 118-128.

20. Cooper ES, Schober KE, Drost WT. Smaga bronhokonstrikcija pēc bronhoalveolu skalošanas sunim ar eozinofīlām elpceļu slimībām. J Am Vet Med Assoc 2005; 227 (8): 1257-1262.

21. Džonsons LR, karaliene EV, Vernau W u.c. Suņu ar apakšējo elpceļu infekciju bronhualveolu skalošanas šķidruma mikrobioloģiskais un citoloģiskais novērtējums: 105 gadījumi (2001-2011). J Vet Intern Med 2013; 27 (2): 259-267.

22. Kiršvinks N, Leemans J, Delvaux F u.c. Bronhodilatatori bronhoskopijā izraisīja gaisa plūsmas ierobežošanu kaķiem, kas jutīgi pret alergēniem. J Vet Intern Med 2005; 19: 161-167.

23. Padrid PA. Suņa un kaķa laringoskopija un traheobronhoskopija. In: Tams TR, Rawlings CA, red. Mazo dzīvnieku endoskopija. Sv. Louis, MI: Elsevier Mosby, 2011: 331-359.

24. Fluoroskopiski vadāma bronhoalveolārā skalošana (F-Bal) kaķu apakšējo elpceļu paraugu ņemšanai Hooi KS1, Defarges A1, Nykamp S1, Weese S2, Bienzle D2. Klīnisko pētījumu1 un patobioloģijas katedras2, Gelfas universitāte, ON.

Bronhualveolu skalošanas diagnostikas iespējas

M.V. Samsonova

Fibrobronhoskopijas un bronhoalveolārās skalošanas (BAL) tehnikas ieviešana klīniskajā praksē, kas ļauj iegūt bronhu skalošanu (BS) un bronhoalveolāru skalošanu (ALS), ir ievērojami paplašinājusi diagnostikas iespējas pulmonoloģijā. Pateicoties BAL tehnikai, tā kļuva iespējamā pielietošana vesela virkne citoloģisko, bakterioloģisko, imunoloģisko, bioķīmisko un biofizikālo metožu. Šie pētījumi palīdz pareizi diagnosticēt onkoloģiskās slimības un izplatītos procesus plaušās, kā arī ļauj novērtēt iekaisuma procesa aktivitāti bronhoalveolārā telpā.

BAL tehnika

BAL tiek veikts ar fibrobronhoskopiju vietējā vai vispārējā anestēzijā. Bronhoskops tiek ievietots lobārā bronhā (parasti labās plaušas vidējā daiva), bronhu koks tiek izskalots ar lielu daudzumu fizioloģiskā šķīduma, kas sasildīts līdz 37 ° C. Pēc mazgāšanas šķīdumu pilnībā izsūc no bronhu koka.

Bronhoskops tiek ievietots segmentālā bronha atverē, to aizsprostojot. Polietilēna katetru izlaiž caur bronhoskopa biopsijas kanālu un caur to segmentālā bronha lūmenā injicē 50 ml fizioloģiskā šķīduma, kas pēc tam tiek pilnībā iesūkts. Rezultātā iegūtā šķidruma daļa ir bronhu skalošana. Tad katetrs tiek virzīts 6-7 cm dziļi segmentā

Marija Viktorovna Samsonova -

doct. mīļā. zinātnes, galva. laboratorija. patoloģiskā anatomija Pulzdoloģijas pētniecības institūts, Roszdrav.

plaušu bronhu un frakcionēti injicē 4 porcijas 50 ml fizioloģiskā šķīduma, kas katru reizi tiek pilnībā iesūkti. Šīs jauktās porcijas veido bronhoalveolu skalošanu.

BS un ALS pētījumu metodes

Galvenās BS un ALS pētījumu metodes ietver supernatanta bioķīmisko un imunoloģisko pārbaudi, kā arī šūnu nogulumu izpēti. Šajā gadījumā tiek aprēķināta BS un ALS šūnu dzīvotspēja, tiek aprēķināta citogramma, tiek veikti šūnu citoķīmiskie pētījumi, kā arī citobakterioskopiskais novērtējums. Nesen tika izstrādāta metode ALS makrofāgu formulas aprēķināšanai dažādas slimības bronhopulmonārā sistēma. BALF pētījums arī ļauj novērtēt plaušu virsmaktīvās sistēmas stāvokli, mērot virsmas spraigumu un pētot virsmaktīvās vielas fosfolipīdu sastāvu.

BAL šķidruma bronhiālo daļu izmanto kvalitatīviem un kvantitatīviem mikrobioloģiskiem pētījumiem. Turklāt izmaiņas BS šūnu sastāvā var izmantot, lai noteiktu bronhiālā koka iekaisuma reakcijas smagumu.

bronhu epitēlijs 5-20%

ieskaitot

kolonnu epitēlijs 4-15% plakanšūnu epitēlijs 1-5%

alveolu makrofāgi 64-88% neitrofīli 5-11%

limfocīti 2-4%

tuklas šūnas 0–0,5%

eozinofīli 0–0,5%

BAL šķidruma alveolārās daļas normālā citogramma (1. attēls) ir parādīta tabulā. viens.

BS un ALS pētījumu diagnostiskā vērtība

BS un ALS pētījumam ir vislielākā diagnostiskā vērtība, lai novērtētu iekaisuma pakāpi traheobronhiālā kokā ar plaušu audzējiem un alveolāru proteīnozi.

ALS citoloģiskajai pārbaudei ir augsta diagnostiskā vērtība tikai dažām plaušu slimībām. Šādas nosoloģijas ietver histiocitozi X, kurā parādās Langerhansa šūnas (to citoplazmā raksturīgos X ķermeņus nosaka ar elektronu mikroskopu, saskaņā ar imūnfenotipu tās ir CE1 + šūnas). Ar ALS palīdzību ir iespējams apstiprināt plaušu asiņošanas klātbūtni. ALS pētījums tiek parādīts arī, pārbaudot alveolāro proteīnozi, kurai raksturīga ārpusšūnu vielas klātbūtne (2. attēls), kas ir labi definēta, izmantojot gaismu (PIC reakcija) un elektronu mikroskopiju. Šajā slimībā BAL kalpo ne tikai kā diagnostika, bet arī kā terapeitiska procedūra.

Attēls: 1. Normāls ALS šūnu sastāvs. Krāsošana pēc Romanovska. x400.

Ar pneimokoniozi ALS pētījumi var apstiprināt tikai putekļu izraisītāja iedarbību. Konkrētu berilija slimības diagnozi var veikt, pētot ALS šūnu funkcionālo proliferatīvo aktivitāti, reaģējot uz berilija sāļu darbību. Ar azbestozi ALS var atrast azbesta ķermeņus (3. attēls) raksturīgu šķiedru veidā - gan ārpusšūnu, gan intracelulāro. Šie mazie ķermeņi ir azbesta šķiedras, uz kuriem ir apvienojušies hemosiderīns, feritīns un glikoproteīns; tāpēc tie labi nokrāsojas, veicot PIC reakciju un krāsojot Perlu. Ārkārtīgi reti azbesta ķermeņi tiek atrasti personām, kurām ir neprofesionāls kontakts ar azbestu, savukārt šādu daļiņu koncentrācija ALS nepārsniedz 0,5 1 ml. ALS var atrast arī pseido-azbesta ķermeņus - ar pneimokoniozi, kas saistīta ar ogļu, alumīnija, stikla šķiedras utt. Putekļu iedarbību.

Pacientiem ar imūndeficīta stāvokļiem (īpaši ar HIV infekciju) BALF ir izvēlēta metode infekcijas plaušu bojājumu patogēnu noteikšanai. BAL šķidruma jutīgums pneimocistozes infekcijas diagnostikā (4. attēls), pēc dažiem datiem, pārsniedz 95%.

Citās slimībās ALS testēšana nav īpaši specifiska, taču tā var dot papildus informācija, ko novērtē kopā ar klīniskajiem, radioloģiskajiem, funkcionālajiem un laboratorijas datiem.

Ar difūzu alveolāru asiņošanu (DAC), kas rodas dažādu slimību gadījumā, ALS var atrast brīvus un fagocitozētus eritrocītus un siderofāgus (5. attēls). ALS kalpo efektīva metode noteikt DAK pat tad, ja nav hemoptīzes, kad šī stāvokļa diagnosticēšana ir ārkārtīgi sarežģīta. DAK ir jānošķir no akūta elpošanas distresa sindroma (ARDS),

kurā siderofāgi parādās arī ALS.

Ietvaros diferenciāldiagnoze idiopātiska fibrozējoša alveolīta (ELISA) ALS citoloģiskā izmeklēšana ļauj izslēgt citas intersticiālas plaušu slimības. Tādējādi mērens neitrofilu un eozinofilu īpatsvara pieaugums ALS nav pretrunā ar ELISA diagnozi. Ievērojams limfocītu un eozinofilu procentuālās daļas pieaugums ELISA nav raksturīgs, un šajos gadījumos jums vajadzētu domāt par citu alveolītu (eksogēnu alerģisku, medicīnisku vai profesionālu).

ALS citoloģiskā izmeklēšana kalpo par jutīgu metodi eksogēnā alerģiskā alveolīta (EAA) diagnostikā. Liels limfocītu procentuālais daudzums, plazmas un tuklo šūnu klātbūtne, kā arī “putekļaini” makrofāgi, apvienojumā ar anamnētiskiem un laboratorijas datiem ļauj diagnosticēt EAA. Eosi-

1. tabula. ALS normālā citogramma

Šūnu sastāvs no ALS nesmēķētājiem

Citoze, šūnu skaits x106 / ml 0,1-0,3\u003e 0,3

Alveolu makrofāgi,% 82-98 94

Limfocīti,% 7-12 5

Neitrofīli,% 1-2 0,8

Eozinofīli,%<1 0,6

Tuklo šūnu skaits,%<1 <1

Attēls: 2. Ārpusšūnu viela ALS ar alveolāru proteīnozi. Krāsošana pēc Romanovska. x400.

nofīli vai milzu daudzkodolu šūnas (6. attēls). Starp limfocītiem dominē šūnas ar imūnfenotipu C03 + / C08 + / C057 + / C016-. Jāatceras, ka dažus mēnešus pēc slimības sākuma kopā ar T-slāpētājiem T-palīgu skaits sāk palielināties. Papildu pētījumu metodes ļauj izslēgt citas slimības, kurās palielinās limfocītu īpatsvars ALS, piemēram, difūzās saistaudu slimības, ārstnieciskais alveolīts (LA), bronhiolīta iznīcināšana ar pneimonijas organizēšanu (OBOP), silikoze.

Sarkoidozes gadījumā tiek atzīmēts arī limfocītu īpatsvara pieaugums ALS, un sarkoidozi raksturo

Attēls: 4. Pneumocystis jiroveci ALS. Krāsošana pēc Romanovska. x400.

Attēls: 5. Siderofāgi ALS. Perlsa krāsošana. x100.

www.atmosphere-ph.ru

Attēls: 6. EAA: palielināts eozinofilu, neitrofilu, limfocītu īpatsvars ALS, milzīgā daudzkodolu šūnā. Krāsošana pēc Romanovska. x200.

Attēls: 7. “Amiodarona plaušas” (LA): makrofāgi ar putojošu citoplazmu ALS. Krāsošana pēc Romanovska. х1000, eļļas iegremdēšana.

Attēls: 8. ALS citogrammas limfocītiskais tips. Krāsošana pēc Romanovska. х1000, eļļas iegremdēšana.

t-palīgu un T-slāpētāju (С04 + / СЭ8 +) attiecība ir lielāka par 3,5 (šīs pazīmes jutīgums ir 55-95%, specifiskums līdz 88%). Milzu daudzkodolu šūnas (svešķermeņa šūnu veids) var atrast arī ALS pacientiem ar sarkoidozi.

Attēls: 9. ALS neitrofilā tipa citogramma. Krāsošana pēc Romanovska. х1000, eļļas iegremdēšana.

Ar zāļu alveolām

max morfoloģiskās izmaiņas plaušās var būt dažādas, bieži novēro alveolāru hemorāģisko sindromu vai OBOP. Eozinofilu un neitrofilu proporcijas pieaugumu var atzīmēt ALS citogrammā, bet visbiežāk PA

2. tabula. ALS citoloģiskās analīzes izmantošanas piemēri diferenciāldiagnozei (saskaņā ar OgeP M. et al., 2000)

Citogrammas rādītāji

ALS un to novērtējums

ALS citogrammas klīniskie piemēri

Citoze, x104 / ml 29 110 100 20 64

Makrofāgi,% 65,8 18,2 19,6 65,7 41,0

Limfocīti,% 33,2 61,6 51,0 14,8 12,2

Neitrofīli,% 0,6 12,8 22,2 12,4 4,2

Eozinofīli,% 0,2 6,2 7,0 6,8 42,2

Masas šūnas,% 0,2 1,0 0,2 0,3 0,4

Plazmocīti,% 0 0,2 0 0 0

CO4 + / CO8 + attiecība 3,6 1,8 1,9 2,8 0,8

Baktēriju kultūra - - - - -

Visticamāk diagnoze Sarkoidoze EAA LA ELISA OEP

Pareizas diagnozes varbūtība *,% 99,9 99,6 98,1 94,3 Nav aprēķināts

* Aprēķināts, izmantojot matemātisko modeli. Leģenda: OEP - akūta eozinofīla pneimonija.

limfocītu procentuālās daļas pieaugums, starp kuriem parasti dominē CE8 + šūnas. Ļoti augsts neitrofilo leikocītu saturs ALS rodas, lietojot antidepresantus nomifensīnu (neitrofilu daļa var sasniegt 80%, kam seko limfocītu skaita samazināšanās un vienlaicīga palielināšanās). Lietojot amiodaronu LA (“amiodarona plaušas”), specifiskas ALS izmaiņas notiek liela skaita “putojošu” makrofāgu parādīšanās veidā (7. attēls). Šī ir ļoti jutīga, bet ne īpaši specifiska pazīme: vieni un tie paši makrofāgi ir sastopami arī citās slimībās (EAA, OBOP), kā arī pacientiem, kuri lieto amiodaronu, ja nav alveolīta (amiodarons palielina fosfolipīdu saturu, īpaši fagocītos).

Citos gadījumos, kad BAL neatklāj ļoti specifiskas slimības pazīmes, šī metode ļauj ierobežot diferenciāldiagnostikas meklēšanu (2. un 3. tabula) līdz noteiktas nosoloģisko vienību grupas ietvaram ar vienu vai citu alveolīta veidu:

Limfocītisks (limfocītu īpatsvara pieaugums, 8. att.): Sarkoidoze, paaugstinātas jutības pneimonīts, pneimonija pēc radiācijas, ELISA, hronisks infekcijas process plaušās, AIDS, silikoze, Sjogrena sindroms, Krona slimība, karcinomatoze, zāļu pneimonopātijas;

Neitrofīls (neitrofilo leikocītu īpatsvara pieaugums, 9. attēls): sklerodermija, dermatomiozīts, akūts infekcijas process plaušās, sarkoidoze ļaundabīgā gaitā, azbestoze, ārstnieciskais al-veolīts;

Eozinofīls (eozinofilu īpatsvara pieaugums, 10. attēls): angiīts Cher-dzha-Strauss, eozinofīlā pneimonija, zāļu alveolīts;

Jaukts (11. attēls): tuberkuloze. histiocitoze.

Diagnozējot plaušu vēzi, priekšrocība ir BAL metodei

3. tabula. ALS citoloģiskie parametri normālos apstākļos un to izmaiņas dažādās patoloģijās (pēc OreP M. et al., 2000 datiem)

Alveolāri makrofāgi Limfocīti Neitrofīli Eozinofīli Plasmacīti Mājas šūnas CD4 + / CD8 + attiecība

Normālās vērtības

Nesmēķētāji 9,5-10,5 * 0,7-1,5 * 0,05-0,25 * 0,02-0,08 * 0 * 0,01-0,02 * 2,2-2,8

85-95% 7,5-12,5% 1,0-2,0% 0,2-0,5% 0% 0,02-0,09%

Smēķētāji 25-42 * 0,8-1,8 * 0,25-0,95 * 0,10-0,35 * 0 * 0,10-0,35 * 0,7-1,8

90-95% 3,5-7,5% 1,0-2,5% 0,3-0,8% 0% 0,02-1,0%

Neinfekcijas slimības

Sarkoidoze T \u003d \u003d / T - \u003d / T T / \u003d / 4

EAA "Foamy" MF TT T \u003d / T +/- TT 4 / \u003d

Zāļu "Foamy" MF TT T T +/- TT 4 / \u003d

alveolīts

IFA T T / TT T - T \u003d

OBOP "Foamy" MF T T T - / + \u003d / T 4

Eozinofīlā T \u003d TT +/- \u003d / T 4

pneimonija

Alveolārā "putojošā" MF T \u003d \u003d - N. d. T / \u003d

proteīnoze

Savienojuma slimības - T \u003d / T \u003d / T - \u003d / T T / \u003d / 4

ķermeņa audi

Pneimokonioze VKV (daļiņas) T T \u003d / T - \u003d / T T / \u003d / 4

Difūzā alveo- krāsošana \u003d / T T \u003d / T - N. d. \u003d

lary asiņošana uz Fe: +++

ARDS krāsviela Fe: + Т ТТ Т - \u003d / Т 4 / \u003d

Ļaundabīgi audzēji

Adenokarcinoma \u003d \u003d \u003d - \u003d \u003d

Vēža limfangīts T T \u003d \u003d T / \u003d - / + T / \u003d 4 / \u003d

Hemoblastoze T T T - / + T 4 / \u003d

Un infekcijas

Baktēriju VKB (baktērijas) \u003d \u200b\u200bTT T - N. d. \u003d

Vīrusu VKB T T T - N. d. T / \u003d

Tuberkuloze VKV (mikobaktērijas) T \u003d T - T \u003d

HIV VKV T T T / \u003d - N. d. 4

Apzīmējumi: MF - makrofāgi, VKV - intracelulāri ieslēgumi; rādītājs: T - palielināts; TT - ievērojami palielinājās; 4 -samazināts; \u003d / T - nav mainīts, reti palielinās; T / \u003d / 4 - var palielināt, samazināt vai nemainīt; Т / ТТ - palielinājās, reti ievērojami palielinājās; T / \u003d - palielināts, retāk nemainīts; 4 / \u003d - nolaists, reti nemainīts; \u003d - nav mainīts; - Nē; - / + - ir reti; +/- satikties; N. d. - nav datu.

* Dati tiek uzrādīti absolūtos skaitļos x104ml-1.

pirms krēpu pārbaudes attiecībā uz audzēja šūnu noteikšanu, jo materiāls var būt

izstaro no daivas vai segmenta, kur audzējs ir lokalizēts. BAL, visticamāk

diagnosticēt perifēros audzējus, ieskaitot bronhioloalveolāru vēzi (12. attēls).

Attēls: 10. ALS citogrammas eozinofilais tips, Shar-co-Leiden kristāli. Krāsošana pēc Romanovska. x200.

Attēls: 11. Jaukta tipa ALS citogramma: palielināts limfocītu, neitrofilu, eozinofilu īpatsvars. Krāsošana pēc Romanovska. х1000, eļļas iegremdēšana.

Attēls: 13. ALS hroniskā bronhīta gadījumā: cilindrisku ciliated šūnu klātbūtne, neitrofīli, kokālās floras uzkrāšanās. Krāsošana pēc Romanovska. х1000, eļļas iegremdēšana.

Attēls: 14. Mycobacterium tuberculosis ALS gadījumā. Krāsošana pēc Tsilu-Nil-sen. х1000, eļļas iegremdēšana.

Attēls: 15. Candida albicans sēnītes pseidomicēlijs ALS. Krāsošana pēc Romanovska. x200.

Citobakterioskopiskā metode ļauj identificēt un daļēji kvantitatīvi novērtēt baktēriju (13. att.), Mikobaktēriju (14. att.) Un sēņu (15. att.) Saturu ALS. Šie rezultāti (baktērijas var diferencēt pēc Grama) kalpo par pamatu atbilstošas \u200b\u200bantibiotiku terapijas iecelšanai pirms bakterioloģisko pētījumu rezultātu iegūšanas. Kazuistiskā veidā

Attēls: 16. Būtisks neitrofilo leikocītu skaita pieaugums ALS, daudzos vienšūņos, piemēram, amēbās. Krāsošana pēc Romanovska. x200.

ALS pētījums ļauj novērtēt infekcijas slimību iekaisuma procesa aktivitātes pakāpi un terapijas efektivitāti. Zemu iekaisuma aktivitātes pakāpi raksturo neitrofilo leikocītu skaita pieaugums ALS 10% robežās,

vidējs - līdz 11-30%, augsts - vairāk nekā 30%.

Histoloģisko metožu izmantošana BAL šķidruma šūnu pētīšanai ir iespējama ar to augsto dzīvotspēju (vairāk nekā 80%).

Secinājums

Novērtējot izmaiņas, kas identificētas BS un UAS, jāievēro noteikti noteikumi un jāatceras sekojošais:

Atklātās izmaiņas ir raksturīgas tikai pētītajam segmentam, tādēļ, ja process nav difūzs, pret tām jāizturas piesardzīgi;

Atklātās izmaiņas ir raksturīgas konkrētam laika brīdim;

Tā kā plaušas vienlaikus ietekmē daudzi faktori (smēķēšana, piesārņotāji utt.), Vienmēr ir jāizslēdz šo faktoru ietekmes iespēja uz plaušu patoloģijas attīstību.

Čerņajevs A.L., Samsonova M.V. Plaušu patoloģiskā anatomija: Atlas / Red. Chuchalina A.G. M., 2004. gads.

Šapiro N.A. Plaušu slimību citoloģiskā diagnostika: Krāsu atlants. T. 2. M., 2005. gads.

Baughman R. P. Bronchoalveolar lavage. Sv. Luiss, 1992. gads.

Costabel U. Bronchoalveolar lavage atlants. L., 1998. gads.

Drents M. u.c. // Eiro. Resp. Monogrāfija. V 5. pirmd. 14. Hadersfīlds, 2000. 63. lpp.

Izdevniecības "ATMOSPHE

Amelīna E.L. et al. Mukoaktīvā terapija /

Red. A.G. Čučalins, A.S. Beļevskis

Monogrāfijā apkopotas mūsdienu idejas par mukocilārā klīrensa struktūru un darbību, tā traucējumiem dažādās elpošanas sistēmas slimībās, pētījumu metodes; tiek aplūkotas galvenās ārstnieciskās un nemedicīniskās metodes mukocilārā klīrensa koriģēšanai bronhopulmonārā patoloģijā. 128 lpp., Il.

Ģimenes ārstiem, terapeitiem, pulmonologiem, medicīnas studentiem.